Разработка новых подходов на основе принципов иммуно-ПЦР для детекции и изучения биологически значимых антигенов и антител, обнаружение которых требует сверхвысокой чувствительности

Раннее выявление маркеров различных заболеваний человека способно повысить качество их диагностики, а также позволить вовремя назначить адекватное лечение. Решение данной проблемы требует разработки методов, позволяющих специфично выявлять антигены и антитела, находящиеся в тканях и жидкостях организма в сверхмалых количествах. Использование стандартных методов анализа не позволяет диагностировать заболевание на ранней стадии и определить его характер. Создание новых высокочувствительных методов определения в тканях организма антигенов и антител, ассоциированных с различными заболеваниями, является актуальной задачей медицины и молекулярной биологии. Проект планируется осуществить на двух модельных системах: детекции анти-гликановых антител, ассоциированных с развитием опухолей (в частности анти-LeC IgM антител) и детекции IgG4, IgE, IgA1 и IgA2 антител человека в жидкостях организма при аллергии на клещей домашней пыли, грибы Alternaria alternata и Aspergillus fumigatus. Подходы на основе метода иммуно-ПЦР (иПЦР), разработанные в ходе выполнения работ по проекту, можно будет применять для детекции и идентификации биологически важных молекул, которые присутствуют в тканях организма в предельно низких концентрациях. Аллергическими заболеваниями первого типа (IgE-зависимыми) страдает до 30% населения развитых стран: у 10% детей формируется аллергическая астма, что значительно ухудшает качество жизни не только детей, но и их семей. Дети с аллергическими заболеваниями чаще болеют, хуже учатся, не могут заниматься спортом. Аллергия имеет тенденцию к прогрессированию (атопический марш) в тяжелые формы (астма, атопический дерматит). Диагностика аллергии затруднена из-за низкой аффинности IgE антител. В России нет отечественных диагностикумов для определения аллерген-специфичных IgE в сыворотке крови. При этом единственным патогенетическим методом лечения аллергии является специфическая иммунотерапия, в основе которой лежит введение в кровь пациента низких доз целевого аллергена. Выявление целевого аллергена является определяющим для эффективности терапии. Ранняя диагностика и ранняя профилактика позволят остановить прогрессирование аллергического заболевания в тяжелые формы, такие как астма и атопический дерматит. Процессы изменения гликозилирования белков при патологии, появление углеводных структур, выступающих в качестве онкомаркеров, с одной стороны, и изменение спектра антител с другой, связаны между собой. Исследование этих процессов и их возможных корреляций между собой требует развития новых подходов диагностики, обладающих высокой чувствительностью и позволяющих проводить количественное определение уровня целевых молекул. Антитела к дисахариду Lec (Lewis C, Galβ1—3GlcNAc) входят в состав репертуара естественных анти-гликановых антител человека. Их относят к консервативным антителам, которые встречаются практически у всех здоровых людей и незначительно варьируют по эпитопной специфичности и авидности. В качестве естественных антител они неспособны взаимодействовать с нормальными углеводными структурами, содержащими Lec. Однако, при патологии, например, в процессе малигнизации клеток, часто происходит нарушение гликозилирования и “проявление” ранее скрытых эпитопов. Так, характерной чертой рака молочной железы (РМЖ) является повышенная экспрессия аномально гликозилированного муцина MUC1. Показано, что моноклональные антитела способны узнавать Lec в составе опухолевого гликопротеина, а фракции анти-Lec антител, выделенные из крови пациентов с диагнозом РМЖ, узнают опухолевые клетки. Также показано снижение титра анти-Lec IgM антител при развитии опухоли (Тупицын и др., 2009). При этом чувствительности классического ИФА недостаточно для количественного определения уровня антигликановых антител (Huflejt et al., 2009). В рамках настоящего проекта предполагается разработка инновационных методов, способных обеспечить новые пределы детекции антигенов и антител (превышение чувствительности по сравнению с ИФА более чем в 100 раз). Метод иПЦР по своей сути аналогичен иммуноферментному анализу (ИФА), и включает те же основные этапы, однако отличается от ИФА типом детектируемой метки, которой в данном случае является последовательность ДНК. Детекция сигнала производится с помощью метода количественной ПЦР (кПЦР, также ПЦР «в реальном времени») с праймерами, специфичными к маркерной последовательности. кПЦР характеризуется сверхвысокой чувствительностью (предел обнаружения около 10 молекул в реакционной пробирке), что делает его комбинацию с ИФА перспективной в качестве основы для создания эффективных тест-систем для обнаружения биологически важных молекул. Специфичность и чувствительность метода иПЦР в целом определяется, прежде всего, аффинностью используемых антител. Предел обнаружения может достигать десятков фг/мл антигена. В работе планируется адаптация метода иПЦР для детекции биомаркеров в двух модельных системах, представляющих важное медицинское и общебиологическое значение (аллергии и опухолевой трансформации клеток). Для повышения качества диагностики этих заболеваний необходимо серьёзное увеличение чувствительности и воспроизводимости существующих методов Оптимизация метода иПЦР будет включать в себя несколько этапов. Прежде всего, будет выбран способ конъюгирования ДНК и антитела. В первую очередь планируется опробовать уже хорошо зарекомендовавший себя универсальный метод, основанный на использовании супрамолекулярных комплексов, образованных фрагментами ДНК, биотинилированными с 5'- и 3'-концов, стрептавидином, и биотинилированными антителами. Также планируется синтезировать ковалентные конъюгаты ДНК-антитело и сравнить их эффективность с супрамолекулярными комплексами. Кроме того, будет проведена оптимизация метода иПЦР с точки зрения уровня положительного сигнала и его превышения над фоновым уровнем. Поскольку уровень фона определяется, главным образом, неспецифической сорбцией реагента, содержащего ДНК-метку, процесс оптимизации метода должен быть направлен, прежде всего, на снижение уровня неспецифичной сорбции антител, и ДНК-метки. Для этого необходимо оптимизировать условия иммунохимической реакции (протестировать и отобрать реагенты для блокировки вакантных сайтов сорбции, подобрать концентрации антител и условия инкубации), подобрать концентрации конъюгата ДНК-антитело, условия промывок, и условия проведения количественной ПЦР. В рутинной работе для детекции сигнала (или анализа результатов реакции?) наиболее целесообразно использовать кПЦР, так как только этот подход позволяет проводить количественную оценку содержания ДНК в пробе и упрощает проведение анализа. Таким образом, конечной стадией проведения анализа является кПЦР с использованием флуоресцентно-меченных зондов. Мы планируем изучить флуорогенные свойства ДНК-зондов с комбинированной системой красителей – с двумя флуорофорами и/или двумя тушителями. Планируется совершенствование дизайна гидролизуемых зондов (TaqMan) и молекулярных маячков (Molecular Beacon) с использованием новых реагентов для модификации олигонуклеотидов. На основе полученных результатов будут разработаны основанные на иПЦР диагностикумы для определения в сыворотке крови антител к гликану LeC и антител к основным аллергенам, позволяющие повысить эффективность диагностики и специфической терапии аллергии и РМЖ. Фундаментальными аспектами представленного проекта являются исследования по выявлению корреляции между уровнем антител к LeC и подверженностью человека РМЖ и определение роли IgA2 субкласса антител, ассоциированных с формированием IgE антител, в крови, слюне и слезной жидкости. Предположительно, это позволит разработать неинвазивный метод диагностики аллергии, что особенно важно для постановки диагноза у детей, чаще всего страдающих аллергическими заболеваниями, а также онкологических заболеваний. Таким образом, подход на основе иПЦР, эффективность которого будет продемонстрирована на заявленных в проекте модельных системах, может в дальнейшем применяться для обнаружения различных молекул-биомаркеров. Использование предложенного метода позволит как усовершенствовать раннюю диагностику заболеваний, и, как следствие, дать возможность назначать своевременное эффективное лечение, так и помочь в изучении процессов, регулируемых молекулами, встречающимися в биологических системах в предельно низких концентрациях.

Список публикаций по проекту

  1. Maerle AV, Voronina DV, Dobrochaeva KL, Galanina OE, Alekseev LP, Bovin NV, Zavriev SK, Ryazantsev DY (2017). Immuno-PCR technology for detection of natural human antibodies against Lecdisaccharide. Glycoconj J 34 (2), 199–205
  2. Svirshchevskaya E, Fattakhova G, Khlgatian S, Chudakov D, Kashirina E, Ryazantsev D, Kotsareva O, Zavriev S (2016). Direct versus sequential immunoglobulin switch in allergy and antiviral responses. Clin Immunol 170, 31–38
  3. Tsybulsky DA, Kvach MV, Ryazantsev DY, Aparin IO, Stakheev AA, Prokhorenko IA, Martynenko YV, Gontarev SV, Formanovsky AA, Zatsepin TS, Shmanai VV, Korshun VA, Zavriev SK (2016). Molecular beacons with JOE dye: Influence of linker and 3′ couple quencher. Mol Cell Probes 30 (5), 285–290
  4. Ryazantsev DY, Voronina DV, Zavriev SK (2016). Immuno-PCR: achievements and perspectives. Biochemistry (Mosc) 81 (13), 1754–1770
  5. Simonova MA, Pivovarov VD, Ryazantsev DY, Dolgova AS, Berzhets VM, Zavriev SK, Svirshchevskaya EV (2018). Comparative diagnostics of allergy using quantitative immuno-PCR and ELISA. Bioanalysis 10 (10), 757–767
  6. Stakheev AA, Ryazantsev DY, Zvezdina YK, Baranov MS, Zavriev SK (2018). A Novel Fluorescent GFP Chromophore Analog-Based Dye for Quantitative PCR. Biochemistry (Mosc) 83 (7), 855–860