-Молекулярно-биофизические аспекты олигомеризации мембранных доменов рецепторов, определяющие клеточную сигнализацию в норме и онкогенезе

Трансмембранные (ТМ) домены мембранных белков и, в первую очередь, рецепторов играют важную роль в работе клеточных мембран. Они участвуют в процессах сигнализации и транспорта веществ через мембрану, а также обеспечивают формирование пространственной структуры мембранных белков. В большинстве случаев данные ТМ-домены представлены одной или несколькими альфа-спиралями, пронизывающими мембрану. Битопические (т. е. имеющие одну спираль в ТМ-домене) рецепторы, такие как рецепторные тирозинкиназы (РТК), рецепторы цитокинов и другие, представляют повышенный интерес для биомедицинских исследований и приложений, поскольку их дисфункция приводит к серьезным патологиям, в том числе раку и диабету. Несмотря на активное исследование упомянутых мембранных рецепторов с помощью компьютерного моделирования и биофизических методов, молекулярные механизмы работы таких белков в норме и в патологии остаются неясными. В частности, предполагается существование механизма как лиганд-индуцированной, так и спонтанной активации данных сигнальных систем в патологии. Работы последних лет показывают, что для РТК и рецепторов цитокинов конфигурация (взаимное расположение в пространстве) ТМ-доменов непосредственно связана с активацией этих молекул. В то же время нет данных о непосредственной взаимосвязи перестроек в различных частях молекул рецепторов. Важным является вопрос о роли липидной мембраны в передаче сигнала и о взаимном влиянии в системе белок-мембрана. В структурной биологии часто используют редукционистский подход, который заключается в изучении молекул рецепторов по частям: отдельно внеклеточных и киназных доменов в водном окружении и отдельно - ТМ доменов в мембраноподобной среде. Компьютерное моделирование является необходимым дополнением к экспериментальным подходам в области изучения мембранных белков, поскольку позволяет выявить динамические взаимосвязи между различными частями молекулы рецептора и липидным окружением. Настоящий проект нацелен на всестороннее изучение димеризации мембранных белков в липидном окружении. В первую очередь, будет проверена гипотеза о потенциальном участии липидного бислоя в передаче сигнала рецепторными тирозинкиназами, выдвинутая недавно авторами проекта на основании изучения модельных систем. Ранее мембрану рассматривали как инертную среду, в которой ТМ домены белков способны свободно двигаться. Однако, в отличие от гомогенного растворителя, липидная компонента клеточной мембраны – высокогетерогенная, самоорганизующаяся динамическая система. Поэтому, помимо средних термодинамических параметров димеризации ТМ-доменов необходимо знать их динамические свойства. Такими свойствами могут являться характеристическая динамика ТМ спиралей и молекул водно-липидного окружения, геометрические и временные параметры неоднородностей, возникающих в липидной мембране вследствие влияния белка. Полученные ранее авторами данные о периодическом характере движений ТМ-спиралей и связанных с ними липидов указывают на потенциальную возможность аллостерической передачи сигнала внутри молекулы рецептора с участием липидов. Однако для поиска механизмов влияния на онкогенные формы РТК необходимо приблизиться к пониманию механизма взаимодействия между разными частями рецептора на атомарном уровне. Используемый в настоящем Проекте мультидисциплинарный подход позволит объединить все преимущества современных методов компьютерного моделирования биомолекул и структурной биологии для решения задачи детального описания белок-белковых взаимодействий в мембранах, влияния точечных онкогенных мутаций на равновесие между различными состояниями сигнальных систем клетки, а также поиска способов направленного влияния на патологические состояния организма с помощью воздействия на ТМ-домены целевых РТК и других рецепторов с помощью "пептидов-перехватчиков" и модуляции локальных свойств липидного окружения. В качестве объектов исследования выбраны рецепторы тромбоцитарного фактора роста PDGFRa, семейство рецепторов эпидерамльного фактора роста ErbB, рецептор эндотелиального фактора роста сосудов а также нейраминидаза-1 человека, рецепторы инсулина и инсулин-подобного фактора роста IGF1R. Все эти мембранные белки объединяет то, что они могут быть вовлечены в процесс онкогенеза при возникновении точечных мутаций в их генах. Предполагается, что результатом работы будет детальное описание механизмов спираль-спиральных взаимодействий в мембранах с учётом активной роли мембранного окружения, будет расшифрован механизм работы мутантных онкогенных форм данных белков, а также предложены несколько "пептидов-перехватчиков", являющихся прототипами перспективных селективных модуляторов активности онкогенных форм данных РТК. Важнейшей особенностью настоящего Проекта является включение в план работ целого комплекса уникальных биофизических экспериментов (оптическая и ЯМР-спектроскопия, белковая инженерия и пр.), с помощью которых будут получены структурно-динамические данные для ряда ТМ доменов РТК дикого типа и мутантных форм. Как показали предыдущие совместные исследования авторов (см. список публикаций) – сотрудников двух лабораторий Отдела структурной биологии ИБХ РАН, только применение взаимодополняющего комплексного подхода, сочетающего новейшие экспериментальные и вычислительные методики, позволяет получить «прорывные» результаты мирового уровня. Именно эта стратегия исследований будет применена в данном Проекте.

January 6, 2018 — December 31, 2022

Efremov R.G. (PI)

Laboratory of biomolecular modeling

Grant, RSF

List of publications

  1. Panina I, Krylov N, Nolde D, Efremov R, Chugunov A (2020). Environmental and dynamic effects explain how nisin captures membrane-bound lipid II. Sci Rep 10 (1), 8821
  2. Volynsky PE, Nolde DE, Zakharova GS, Palmer RA, Tonevitsky AG, Efremov RG (2019). Specific refolding pathway of viscumin A chain in membrane-like medium reveals a possible mechanism of toxin entry into cell. Sci Rep 9 (1), 413
  3. Albrecht C, Kuznetsov AS, Appert-Collin A, Dhaideh Z, Callewaert M, Bershatsky YV, Urban AS, Bocharov EV, Bagnard D, Baud S, Blaise S, Romier-Crouzet B, Efremov RG, Dauchez M, Duca L, Gueroult M, Maurice P, Bennasroune A (2020). Transmembrane Peptides as a New Strategy to Inhibit Neuraminidase-1 Activation. Front Cell Dev Biol 8, 611121
  4. Nadezhdin KD, Neuberger A, Trofimov YA, Krylov NA, Sinica V, Kupko N, Vlachova V, Zakharian E, Efremov RG, Sobolevsky AI (2021). Structural mechanism of heat-induced opening of a temperature-sensitive TRP channel. Nat Struct Mol Biol 28 (7), 564–572
  5. Volynsky P, Maltseva D, Tabakmakher V, Bocharov EV, Raygorodskaya M, Zakharova G, Britikova E, Tonevitsky A, Efremov R (2022). Differences in Medium-Induced Conformational Plasticity Presumably Underlie Different Cytotoxic Activity of Ricin and Viscumin. Biomolecules 12 (2),
  6. Kuznetsov AS, Zamaletdinov MF, Bershatsky YV, Urban AS, Bocharova OV, Bennasroune A, Maurice P, Bocharov EV, Efremov RG (2020). Dimeric states of transmembrane domains of insulin and IGF-1R receptors: Structures and possible role in activation. BIOCHIM BIOPHYS ACTA 1862 (11), 183417
  7. Lesovoy DM, Dubinnyi MA, Nolde SB, Bocharov EV, Arseniev AS (2019). Accurate measurement of dipole/dipole transverse cross-correlated relaxation Γ2 in methylenes and primary amines of uniformly 13C/15N-labeled proteins. J Biomol NMR 73 (5), 245–260
  8. Aliper ET, Krylov NA, Nolde DE, Polyansky AA, Efremov RG (2022). A Uniquely Stable Trimeric Model of SARS-CoV-2 Spike Transmembrane Domain. Int J Mol Sci 23 (16),
  9. Panina IS, Krylov NA, Chugunov AO, Efremov RG, Kordyukova LV (2022). The Mechanism of Selective Recognition of Lipid Substrate by hDHHC20 Enzyme. Int J Mol Sci 23 (23), 14791
  10. Dubovskii PV, Efremov RG (2018). The role of hydrophobic /hydrophilic balance in the activity of structurally flexible vs rigid cytolytic polypeptides and analogues developed on their basis. Expert Rev Proteomics 15 (11), 873–886
  11. Polyansky AA, Bocharov EV, Velghe AI, Kuznetsov AS, Bocharova OV, Urban AS, Arseniev AS, Zagrovic B, Demoulin JB, Efremov RG (2019). Atomistic mechanism of the constitutive activation of PDGFRA via its transmembrane domain. BIOCHIM BIOPHYS ACTA 1863 (1), 82–95
  12. Bocharov EV, Nadezhdin KD, Urban AS, Volynsky PE, Pavlov KV, Efremov RG, Arseniev AS, Bocharova OV (2019). Familial L723P Mutation Can Shift the Distribution between the Alternative APP Transmembrane Domain Cleavage Cascades by Local Unfolding of the η-Cleavage Site Suggesting a Straightforward Mechanism of Alzheimer's Disease Pathogenesis. ACS Chem Biol 14 (7), 1573–1582
  13. Efremov RG (2019). Dielectric-Dependent Strength of Interlipid Hydrogen Bonding in Biomembranes: Model Case Study. J Chem Inf Model 59 (6), 2765–2775
  14. Bocharov EV, Gremer L, Urban AS, Okhrimenko IS, Volynsky PE, Nadezhdin KD, Bocharova OV, Kornilov DA, Zagryadskaya YA, Kamynina AV, Kuzmichev PK, Kutzsche J, Bolakhrif N, Müller-Schiffmann A, Dencher NA, Arseniev AS, Efremov RG, Gordeliy VI, Willbold D (2021). All-d-Enantiomeric Peptide D3 Designed for Alzheimer’s Disease Treatment Dynamically Interacts with Membrane-Bound Amyloid-β Precursors. J Med Chem 64 (22), 16464–16479