-Разработка новых молекулярных инструментов ферментативного и флуорогенного флуоресцентного мечения для прижизненной визуализации в живых системах

Технологии современной флуоресцентной микроскопии позволили достичь беспрецедентного уровня понимания многих биологических процессов и вошли в арсенал ключевых инструментов современной биологии и молекулярной медицины. Использование подобных технологий невозможно без введения в исследуемые объекты различных меток, в роли которых могут выступать флуоресцентные белки, а также синтетические флуорофоры. К сожалению, все существующие подходы не лишены недостатков, поэтому создание новых эффективных методов флуоресцентного мечения живых систем является актуальной и важной задачей. В связи с этим, целью настоящего исследования является разработка новых молекулярных инструментов визуализации процессов, протекающих в живых системах. В рамках поставленной цели в проекте планируется реализовать три ключевых направления: 1) Расширение палитры красителей, пригодных для использования в системе флуоресцентного мечения с использованием мутантных форм лигазы липоевой кислоты. В природе эта лигаза катализирует ковалентное связывание липоевой кислоты с определенным пептидным фрагментом. Синтетические мутанты этого фермента могут аналогичным образом катализировать реакцию с флуоресцентными красителями, что может быть использовано для пострансляционного мечения белков, если в них добавлена нужная последовательность аминокислот. К сожалению, на данный момент создано лишь две мутантные формы этой лигазы, которые позволяют вводить синюю и красную флуоресцентные метки. В нашей работе мы планируем расширить этот набор за счет создания новых красителей с похожей структурой и тестирования их против масштабной библиотеки мутантных форм лигазы с измененным сусбтрат-связывающим «карманом». 2) Создание новых пар флуороген/флуороген-активирующий белок на основе хромофоров флуоресцентных белков и белков NanoLuc и Y-FAST. Помимо традиционных подходов к мечению, в которых используются объекты, имеющие постоянную флуоресценцию, недавно был разработан ряд методов основанных на использовании веществ–флуорогенов, которые не имеют выраженной флуоресценции сами по себе, однако приобретают ее при связывании с целевыми белками. Одной из перспективных групп веществ-флуорогенов являются производные хромофоров флуоресцентных белков, характеризующиеся колоссальным химическим разнообразием и широчайшей палитрой цветов. В настоящем проекте мы планируем протестировать возможность активации флуоресценции этих веществ белками NanoLuc и Y-FAST, чьи субстраты имеют очень похожее строение. Использование комбинаторной библиотеки веществ и проведение нескольких итерационных шагов тестирование-анализ-синтез-тестирование позволят добиться нужного результата. 3) Создание новых специфических низкомолекулярных сенсоров, обладающих выраженной флуорогенностью. Третьей частью настоящего проекта станет создание генетически не кодируемых меток. В роли подобных меток чаще всего используются различные сенсоры – флуорофоры, в структуре которых содержится группа чувствительная к определнному аналиту. Основной проблемой, которая возникает при использовании подобных веществ, является нецелевое мечение и наличие фонового сигнала. В настоящей работе мы предлагаем видоизменить этот подход и использовать в роли сенсоров вещетсва с выраженной флуорогенностью – упомянутые производные хромофоров флуоресцентных белков. Такие сенсоры не будут флуоресцентны в воде, а будут флуоресцировать лишь в менее полярных средах. Подобное свойство не позволит наблюдать мгновенного отклика на появление аналитов в водной среде, однако позволит избежать размывания и позволит детектировать аналиты в мембранах. Более того, эти вещества смогут стать отличными красителями, селективными в отношении отдельных органелл клеток, богатых определенными аналитами (окислителями, кислотами, тиолами и т.п.), так как накопление флуоресцентного сигнала будет происходить строго в мембранах подобных органелл. Таким образом, реализация настоящего проекта позволит предложить новые подходы к визуализации процессов, протекающих в живых системах, с помощью генетически кодируемых и некодируемых технологий флуоресцентного мечения с использованием новых флуоресцентных и флуорогенных соединений. Подобные результаты позволят достигнуть прорыва в решении задач многоцветного флуоресцентного мечения, а также визуализации быстродеградирующих белков и других актуальных направлениях, что является важной задачей, не только в фундаментальном, но и в прикладном плане.

List of publications

  1. Chen C, Zhu L, Boulanger SA, Baleeva NS, Myasnyanko IN, Baranov MS, Fang C (2020). Ultrafast excited-state proton transfer dynamics in dihalogenated non-fluorescent and fluorescent GFP chromophores. J Chem Phys 152 (2), 021101
  2. Baleeva NS, Zaitseva SO, Mineev KS, Khavroshechkina AV, Zagudaylova MB, Baranov MS (2019). Enamine–azide [2+3]-cycloaddition as a method to introduce functional groups into fluorescent dyes. Tetrahedron Lett 60 (5), 456–459
  3. Sokolov AI, Myasnyanko IN, Baleeva NS, Baranov MS (2021). Styrene Derivatives of Indole and Pyranone as Fluorogenic Substrates for FAST Protein. Russ. J. Bioorganic Chem. 47 (1), 334–337
  4. Chen C, Boulanger SA, Sokolov AI, Baranov MS, Fang C (2021). A novel dialkylamino gfp chromophore as an environment-polarity sensor reveals the role of twisted intramolecular charge transfer. Chemosensors (Basel) 9 (8),
  5. Boulanger SA, Chen C, Myasnyanko IN, Sokolov AI, Baranov MS, Fang C (2021). Excited-State Dynamics of a meta-Dimethylamino Locked GFP Chromophore as a Fluorescence Turn-on Water Sensor. Photochem Photobiol 98 (2), 311–324
  6. Myasnyanko IN, Sycheva MA, Gavrikov AS, Baleeva NS, Baranov MS (2021). Conformationally Locked 5-Benzylidene-4H-Imidazolthion as a Fluorogenic Dye. Russ. J. Bioorganic Chem. 47 (6), pages1352–1355
  7. Perfilov MM, Zaitseva ER, Smirnov AY, Mikhaylov AA, Baleeva NS, Myasnyanko IN, Mishin AS, Baranov MS (2022). Environment-sensitive fluorogens based on a GFP chromophore structural motif. Dyes Pigm 198, 110033
  8. Mineev KS, Goncharuk SA, Goncharuk MV, Povarova NV, Sokolov AI, Baleeva NS, Smirnov AY, Myasnyanko IN, Ruchkin DA, Bukhdruker S, Remeeva A, Mishin A, Borshchevskiy V, Gordeliy V, Arseniev AS, Gorbachev DA, Gavrikov AS, Mishin AS, Baranov MS (2021). NanoFAST: structure-based design of a small fluorogen-activating protein with only 98 amino acids. Chem Sci 12 (19), 6719–6725
  9. Ryazantsev DY, Myshkin MY, Alferova VA, Tsvetkov VB, Shustova EY, Kamzeeva PN, Kovalets PV, Zaitseva ER, Baleeva NS, Zatsepin TS, Shenkarev ZO, Baranov MS, Kozlovskaya LI, Aralov AV (2021). Probing gfp chromophore analogs as anti-hiv agents targeting ltr-iii g-quadruplex. Biomolecules 11 (10),
  10. Myasnyanko IN, Baleeva NS, Baranov MS (2022). Study of the Position of the Conjugated Substitute Influence on the Optical Properties of the Kaede Protein Chromophore Derivatives. Russ. J. Bioorganic Chem. 48 (3), 651–654
  11. Goncharuk MV, Baleeva NS, Nolde DE, Gavrikov AS, Mishin AV, Mishin AS, Sosorev AY, Arseniev AS, Goncharuk SA, Borshchevskiy VI, Efremov RG, Mineev KS, Baranov MS (2022). Structure-based rational design of an enhanced fluorogen-activating protein for fluorogens based on GFP chromophore. Commun Biol 5 (1), 706
  12. Lushpa VA, Baleeva NS, Goncharuk SA, Goncharuk MV, Arseniev AS, Baranov MS, Mineev KS (2022). Spatial Structure of NanoFAST in the Apo State and in Complex with its Fluorogen HBR-DOM2. Int J Mol Sci 23 (19),
  13. Baleeva NS, Smirnov AY, Baranov MS (2022). Synthesis and Optical Properties of the Conformationally Locked Diarylmethene Derivative of the GFP Chromophore. Russ. J. Bioorganic Chem. 48 (48), 1101–1104
  14. Sokolov AI, Baleeva NS, Baranov MS (2022). Halogen-Containing 4-Hydroxybenzylidene-Rhodanines as Fast Protein Fluorogens. Russ. J. Bioorganic Chem. 48 (48), 1105–1108
  15. Sokolov AI, Gorshkova AA, Baleeva NS, Baranov MS (2022). CycloOctaTetraene as a Photostabilizer of Fast Protein Fluorogen. Russ. J. Bioorganic Chem. 48 (6), 1362–1366
  16. Chen C, Baranov MS, Zhu L, Baleeva NS, Smirnov AY, Zaitseva SO, Yampolsky IV, Solntsev KM, Fang C (2019). Designing redder and brighter fluorophores by synergistic tuning of ground and excited states. Chem Commun (Camb) 55 (17), 2537–2540
  17. Chen C, Zhu L, Baranov MS, Tang L, Baleeva NS, Smirnov AY, Yampolsky IV, Solntsev KM, Fang C (2019). Photoinduced Proton Transfer of GFP-Inspired Fluorescent Superphotoacids: Principles and Design. J Phys Chem B 123 (17), 3804–3821
  18. Ermakova YG, Bogdanova YA, Baleeva NS, Zaitseva SO, Guglya EB, Smirnov AY, Zagudaylova MB, Baranov MS (2019). Pyridine analogue of fluorescent protein chromophore: Fluorogenic dye suitable for mitochondria staining. Dyes Pigm 170,
  19. Povarova NV, Zaitseva SO, Baleeva NS, Smirnov AY, Myasnyanko IN, Zagudaylova MB, Bozhanova NG, Gorbachev DA, Malyshevskaya KK, Gavrikov AS, Mishin AS, Baranov MS (2019). Red-shifted substrates for FAST fluorogen-activating protein based on the GFP-like chromophores. Chemistry 25 (41), 9592–9596
  20. Boulanger SA, Chen C, Myasnyanko IN, Baranov MS, Fang C (2022). Fluorescence Modulation of ortho-Green Fluorescent Protein Chromophores Following Ultrafast Proton Transfer in Solution. J Phys Chem B 126 (27), 5081–5093