Конформационная динамика в образовании и функционировании биомакромолекулярных комплексов для биомедицинских и фармацевтических разработок

Функционирование белков, как основных структурных и функциональных единиц клетки, неразрывно связано с формированием и распадом макромолекулярных комплексов, которое является ответом на изменение внешней или внутренней (мутации) среды и ассоциировано с изменением конформации молекул. Поэтому для изучения макромолекулярных взаимодействий в белоксодержащих комплексах требуются не только знание статической структуры белка, но и данные о конформационной динамике. Наиболее сложной задачей является изучение структуры и динамики белков, которые содержат мало-структурированные подвижные участки, которые принято называть внутренне-неупорядоченными (IDP – intrinsic disordered protein). Такие участки облегчают конформационные перестройки белков, связанные изменением условий или взаимодействием с другими макромолекулами, и их количество увеличивается в ряду бактерии – археи – эукариоты. Проект направлен на изучение фундаментальных основ образования и стабильности макромолекулярных комплексов - изменения конформационной динамики полипептидной цепи белков при образовании комплексов разной природы: белок-белок/пептид, белок-ДНК, белок-РНК и белок-мембрана. Для достижения данной цели будет использован интегративный подход, основанный в первую очередь на комплементарных методах структурной биологии: ЯМР-спектроскопии, рентгеновских методах и микроскопии, а также тандемной масс-спектрометрии. Полученные экспериментальные данные будут интегрированы с вычислительными методами молекулярного моделирования и динамики (МД), включая классическую и ускоренную МД, для получения структурно-динамических моделей комплексов. В качестве конкретных объектов исследования будут выбраны биомолекулярные комплексы разной природы, играющие ключевые роли в функционировании бактериальных или эукариотических клеток и обладающие хорошо известным или предполагамым фармакологическим потенциалом. Будут исследованы взаимодействия архитектурных (нуклеоид-ассоциированных, НАБ) белков бактерий с модельной и нативной ДНК (ДНК-белок) и стеблевого комплекса рибосомы P1/P2 с белковым ингибитором трансляции (тройной РНК-белковый комплекс), а также взаимодействия в цитохром-содержащих электронпереносящих комплексах, включая комплекс мембран-связанных компонентов цитохром P450-зависимой системы человека (многокомпонентные белок-мембранные комплексы). Следует отметить, что понимание как НАБ, в первую очередь их наиболее распространённые представители – гистоноподобные белки регулируют архитектуру и функционирование бактериального генома важно для развития методов антибактериальной терапии, направленной против возбудителей социально-значимых инфекций, в том числе туберкулеза. Изучение «Стеблевого» комплекса рибосомы P1/P2 необходимо как для понимания фундаментальных основ процесса трансляции в клетках, так и для разработки противомикробных и противоопухолевых препаратов нового поколения. Информация о ключевых детерминантах межмолекулярного взаимодействия в системе цитохрома P450, поможет прогнозировать побочные эффекты, вызываемые вновь создаваемыми лекарственными препаратами и предсказать пути модуляции активности данной системы. Для модуляции структурно-динамических характеристик белковых комплексов, будет исследовано влияние биологически-активных пептидов как растительного происхождения, так и синтезированных de novo, на вышеперечисленные комплексы. На базе полученных результатов будет разработана эффективная методологическая платформа, позволяющая выбрать оптимальную комбинацию экспериментальных и вычислительных методов исследования на основе характеристик изучаемой биомакромолекулярной системы. В состав платформы войдут новые алгоритмы, улучшающие качество предсказания и валидации структуры и динамики молекулярных моделей различных белковых комплексов. Применение данной платформы позволит получать структурно-динамические модели биомакромолекулярных комплексов, востребованные в наукоемких биотехнологических разработках в фармацевтике и биомедицине.

6 Января 2023 года — 31 Декабря 2025 года

Бочаров Э.В. (рук.)

Лаборатория биомолекулярной ЯМР-спектроскопии

Грант, РНФ

Список публикаций по проекту

  1. Bershatsky YV, Kuznetsov AS, Idiatullina AR, Bocharova OV, Dolotova SM, Gavrilenkova AA, Serova OV, Deyev IE, Rakitina TV, Zangieva OT, Pavlov KV, Batishchev OV, Britikov VV, Usanov SA, Arseniev AS, Efremov RG, Bocharov EV (2023). Diversity of Structural, Dynamic, and Environmental Effects Explain a Distinctive Functional Role of Transmembrane Domains in the Insulin Receptor Subfamily. Int J Mol Sci 24 (4),
  2. Qiu T, Jahangiri A, Han X, Lesovoy D, Agback T, Agback P, Achour A, Qu X, Orekhov V (2023). Resolution enhancement of NMR by decoupling with the low-rank Hankel model. Chem Commun (Camb) 59 (36), 5475–5478
  3. Savitskaya A, Masso-Silva J, Haddaoui I, Enany S (2023). Exploring the arsenal of antimicrobial peptides: Mechanisms, diversity, and applications. Biochimie 214 (Pt B), 216–227
  4. Agback T, Lesovoy D, Han X, Lomzov A, Sun R, Sandalova T, Orekhov VY, Achour A, Agback P (2023). Combined NMR and molecular dynamics conformational filter identifies unambiguously dynamic ensembles of Dengue protease NS2B/NS3pro. Commun Biol 6 (1), 1193
  5. Петухов МВ, Ракитина ТВ, Агапова ЮК, Петренко ДЕ, Конарев ПВ, Бритиков ВВ, Бритикова ЕВ, Бочаров ЭВ, Штыкова ЭВ (2023). СРАВНИТЕЛЬНОЕ СТРУКТУРНОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ ГИСТОНОПОДОБНЫХ БЕЛКОВ HU МЕТОДОМ МАЛОУГЛОВОГО РЕНТГЕНОВСКОГО РАССЕЯНИЯ. Кристаллография 68 (6), 914–921
  6. Petoukhov MV, Rakitina TV, Agapova YK, Petrenko DE, Konarev PV, Britikov VV, Britikova EV, Bocharov EV, Shtykova EV (2023). Comparative Structural Investigation of Histone-Like HU Proteins by Small-Angle X-ray Scattering. Cryst. Rep 68 (6), 912–919
  7. Petoukhov MV, Rakitina TV, Agapova YK, Petrenko DE, Podshivalov DD, Timofeev VI, Peters GS, Gaponov YA, Bocharov EV, Shtykova EV (2024). Molecular Dynamics and Small-Angle X-ray Scattering: Comparison of Computational and Experimental Approaches to Studying Structures of Biological Complexes. Cryst. Rep 69 (5), 674–681
  8. Sandalova T, Sala BM, Moche M, Ljunggren HG, Alici E, Henriques-Normark B, Agback T, Lesovoy DM, Agback P, Achour A (2024). Crystallographic and NMR Study of Streptococcus pneumonia LCP Protein PsrSp Indicate the Importance of Dynamics in Four Long Loops for Ligand Specificity. Crystals (Basel) 14 (12), 1094