Белковая корона липосом и ее влияние на взаимодействия с клетками кровеносного русла

Применение липосом в качестве наноразмерных систем доставки лекарств на сегодня является признанным подходом к повышению эффективности лечения и улучшению качества жизни онкологических больных. Начиная с 1995 г., когда появился первый препарат Doxil (пегилированные, то есть покрытые полиэтиленгликольными (ПЭГ) цепями липосомы диаметром около 100 нм с инкапсулированным антибиотиком доксорубицином), FDA одобрены к применению в клинике порядка 20 препаратов на основе липосом для лечения онкологических и инфекционных заболеваний. Появились новые технологии промышленного производства липосом. Исследования взаимодействий липосом с белками плазмы крови и формирования белковой короны остаются в центре внимания, поскольку они направлены на повышение эффективности вновь создаваемых липосомальных препаратов. Тем не менее, на сегодня картина этих взаимодействий остается фрагментарной даже для липосом, уже применяемых в клинике. В белковых коронах часто детектируют опсонины, которые способствуют узнаванию липосом рецепторами иммунокомпетентных клеток и потере стабильности, а также возможному развитию у пациента реакций гиперчувствительности различной степени тяжести, связанных с активацией системы комплемента. Кроме того, на поверхности короны могут концентрироваться белки, специфические для рецепторов клеток неиммунного характера, что может кардинально изменить направление доставки липосом. Формирование белковой короны определяется физико-химическими свойствами поверхности носителя, как показали исследования взаимодействий наночастиц на основе полимеров и металлов, в основном, с индивидуальными белками (не с полной плазмой). Спектр изученных липосомальных систем слишком узок, для того чтобы можно было делать выводы о закономерностях образования белковых корон и их влиянии на поведение липосом в организме. В то же время, для различных лекарств в зависимости от структуры молекул требуются разработки липосом различных композиций, с различными физико-химическими параметрами поверхности. Для получения целостной картины взаимосвязи между конструкцией липосом и их поведением в организме необходим целый комплекс исследований, объединяющий анализ структуры и свойств конкретных липидных бислоев, исследование структуры белковой короны липосом, формирующейся в плазме крови, и изучение влияния короны на взаимодействия липосом с клетками кровеносного русла. В ранних работах по изучению липосом-белковых взаимодействий ставилась задача установить связь между количеством белка плазмы в короне и временем жизни липосом в кровотоке. Сегодня, с помощью усовершенствованных инструментальных методов анализа исследования короны наночастиц и липосом вышли на уровень изучения молекулярного состава и построения механистической картины формирования короны. Но лишь несколько работ посвящено изучению причин формирования короны определенной композиции на конкретном типе липосом или влиянию короны на взаимодействия с клетками кровотока, от которых во многом зависит биораспределение и конечный терапевтических эффект. Более того, исследователями применяются различные, не всегда надежные методы выделения липосом-белковых комплексов, что приводит к получению противоречивых результатов. Мы предлагаем использовать комбинацию методов физико-химической биологии для систематического выявления белков плазмы крови, наиболее представленных в белковой короне лекарственных липосом различного состава, исследования закономерностей связывания таких белков с липосомами и влияния этого связывания на дальнейшие взаимодействия липосом с клетками. Объектами исследования являются липосомы, построенные из смесей природных липидов, несущие липофильные пролекарства в бислое. Липофильная модификация лекарств позволяет упростить технологию получения липосом с терапевтически эффективной концентрацией препарата и облегчить внутриклеточную разгрузку липосом. Такой подход к получению липосомальных препаратов получает все большее распространение. Синтетические липидные молекулы в бислое значительно влияют на его физико-химические свойства и, как следствие, на состав белковой короны. Наша группа исследовала отдельные белки плазмы в короне липосом с пролекарствами методами классической биохимии (Кузнецова и Водовозова, 2014; Третьякова 2017). Более широких исследований белковой короны липосом с липофильными пролекарствами в бислое не проводилось. Проект предполагает следующий комплекс исследований. Отбор стабильных в плазме крови человека составов липосом, формирующих жидкофазный липидный бислой, который предпочтителен для встраивания липофильных пролекарств, будет проводиться с помощью флуоресцентной спектроскопии. Использование хромато-масс-спектрометрии в комбинации с методами классической биохимии (электрофорез в полиакриламидном геле и иммуноблоттинг) дадут наиболее полную картину состава белковой короны разнообразных конструкций липосом. Прямое сравнение способов выделения липосом-белковых комплексов, не проводившееся ранее, позволит выделить характерные особенности каждого из подходов и выбрать оптимальный для нашей задачи. Отдельное внимание будет уделено разработке методологии исследования структурной организации короны с помощью конфокальной флуоресцентной микроскопии и иммуноферментного анализа. Насколько нам известно, таких исследований не проводилось не только для липосом, но и для других наночастиц. В совокупности полученные данные позволят сформулировать закономерности формирования белковой короны липосом с липофильными пролекарствами. Изучение взаимодействий липосом-белковых комплексов с лейкоцитами и эндотелиальными клетками сосудов крови с помощью цитофлуориметрии позволит установить, как состав и структура белковой короны липосом влияют на взаимодействие липосом с клетками.

6 Января 2021 года — 30 Декабря 2024 года

Водовозова Е.Л. (рук.), Болдырев И.А., Третьякова Д.С., Онищенко Н.Р.

Лаборатория химии липидов

Грант, РНФ

Список публикаций по проекту

  1. Tretiakova D, Le-Deigen I, Onishchenko N, Kuntsche J, Kudryashova E, Vodovozova E (2021). Phosphatidylinositol stabilizes fluid-phase liposomes loaded with a melphalan lipophilic prodrug. Pharmaceutics 13 (4),
  2. Kobanenko MK, Tretiakova DS, Shchegravina ES, Antipova NV, Boldyrev IA, Fedorov AY, Vodovozova EL, Onishchenko NR (2022). Liposomal Formulation of a PLA2-Sensitive Phospholipid–Allocolchicinoid Conjugate: Stability and Activity Studies In Vitro. Int J Mol Sci 23 (3), 1034
  3. Tretiakova D, Kobanenko M, Le-Deygen I, Boldyrev I, Kudryashova E, Onishchenko N, Vodovozova E (2022). Spectroscopy Study of Albumin Interaction with Negatively Charged Liposome Membranes: Mutual Structural Effects of the Protein and the Bilayers. Membranes (Basel) 12 (11),
  4. Semyachkina-Glishkovskaya O, Shirokov A, Blokhina I, Telnova , Vodovozova E, Alekseeva A, Boldyrev I, Fedosov I, Dubrovsky A, Khorovodov A, Terskov A, Evsukova A, Elovenko D, Adushkina V, Tzoy M, Kurthz J, Rafilov E (2023). Intranasal Delivery of Liposomes to Glioblastoma by Photostimulation of the Lymphatic System. Pharmaceutics 15 (1), 36
  5. Semyachkina-Glushkovskaya O, Bragin D, Bragina O, Socolovski S, Shirokov A, Fedosov I, Ageev V, Blokhina I, Dubrovsky A, Telnova V, Terskov A, Khorovodov A, Elovenko D, Evsukova A, Zhoy M, Agranovich I, Vodovozova E, Alekseeva A, Kurths J, Rafailov E (2023). Low-Level Laser Treatment Induces the Blood-Brain Barrier Opening and the Brain Drainage System Activation: Delivery of Liposomes into Mouse Glioblastoma. Pharmaceutics 15 (2), 567
  6. Onishchenko NR, Moskovtsev AA, Kobanenko MK, Tretiakova DS, Alekseeva AS, Kolesov DV, Mikryukova AA, Boldyrev IA, Kapkaeva MR, Shcheglovitova ON, Bovin NV, Kubatiev AA, Tikhonova OV, Vodovozova EL (2023). Protein Corona Attenuates the Targeting of Antitumor Sialyl Lewis X-Decorated Liposomes to Vascular Endothelial Cells under Flow Conditions. Pharmaceutics 15 (6), 1754
  7. Tretiakova D, Kobanenko M, Alekseeva A, Boldyrev I, Khaidukov S, Zgoda V, Tikhonova O, Vodovozova E, Onishchenko N (2023). Protein Corona of Anionic Fluid-Phase Liposomes Compromises Their Integrity Rather than Uptake by Cells. Membranes (Basel) 13 (7), 681
  8. Vodovozova EL (2024). Editorial for Special Issue: Liposomal and Lipid-Based Drug Delivery Systems and Vaccines. Pharmaceutics 16 (2),
  9. Tretiakova DS, Volynsky PE, Kobanenko MK, Alekseeva AS, Le-Deygen IM, Vodovozova EL, Boldyrev IA (2024). Phosphatidylglycerol in lipid bilayer. Molecular recognition, conformational transitions, hydrogen bonding and microviscosity. J Mol Liq 411,
  10. (конференция) Tretiakova DS, Le-Deygen I, Kudryashova E, Vodovozova EL (2021). Serum albumin penetration in the fluid lipid bilayer of liposomes loaded with a melphalan lipophilic prodrug can be prevented by inclusion of phosphatidylinositol or ganglioside GM1. FEBS Open Bio 11 (Suppl. 1) 2021, 256 11, 256